CC..png   

Юридический и почтовый адрес организации-издателя: САФУ, редакция «Журнала медико-биологических исследований», наб. Северной Двины, 17, г. Архангельск, Россия, 163002
Местонахождение: редакция «Журнала медико-биологических исследований», наб. Северной Двины, 17, ауд. 1336, г. Архангельск

Тел: (818-2) 21-61-21 
Сайт: https://vestnikmed.ru
e-mail: vestnik_med@narfu.ru; 
            vestnik@narfu.ru

о журнале

Регуляция процессов лимфопролиферации в иммунном ответе. С. 35–41.

 Версия для печати

:

612.014:612.017.1

Добродеева Лилия Константиновна, доктор медицинских наук, профессор, заслуженный деятель науки Российской Федерации, заместитель директора по научным вопросам Института физиологии природных адаптаций Уральского отделения РАН (г. Архангельск). Автор 560 научных публикаций, в т. ч. 8 монографий

Патракеева Вероника Павловна, кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории регуляторных механизмов иммунитета Института физиологии природных адаптаций Уральского отделения РАН (г. Архангельск). Автор 83 научных публикаций, в т. ч. одной монографии

Балашова Светлана Николаевна, кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории регуляторных механизмов иммунитета Института физиологии природных адаптаций Уральского отделения РАН (г. Архангельск). Автор 23 научных публикаций

Представлены результаты анализа иммунологического обследования клинически здоровых лиц трудоспособного возраста с целью выяснения взаимосвязи лимфопролиферации с состоянием основных параметров иммунного статуса. В сравнительном плане анализировали состояние иммунологической реактивности у больных со злокачественными новообразованиями эпителиального происхождения, атопическим дерматитом и сахарным диабетом II типа. Во всех случаях лимфопролиферация ассоциирована с увеличением концентрации натуральных киллеров, Т-лимфоцитов с рецептором к трансферрину и общего содержания нейтрофильных гранулоцитов. Кроме того активизация клеток миелоидного ряда сопровождается увеличением общего содержания циркулирующих лимфоцитов. При онкологических заболеваниях на фоне лимфопении пролиферация более выражена, и это касается не только лимфоцитов, нейтрофилов, но и моноцитов. У больных сахарным диабетом II типа кроме высоких уровней содержания CD10+ и CD71+ резко возрастает содержание натуральных киллеров. При атопическом дерматите лимфопролиферация В-лимфоцитов (CD10+) ассоциирована с содержанием IgE и активностью пролиферации моноцитов.

пролиферация, лимфоциты, нейтрофилы, моноциты, иммунный ответ.

  1. Сибиряк С.В., Разумная Ф.Г., Салимгареева М.Х. и др. Влияние афобазола на пролиферативную активность лимфоцитов периферической крови в системе in vitro // Рос. иммунолог. журн. 2009. Т. 3(12), № 1. С. 50−57.
  2. Николаев С.Б., Быстрова Н.А., Лазаренко В.А., Конопля А.И. Иммунометаболические нарушения в условиях гипоксии и их фармакологическая коррекция. Курск, 2010. 224 с.
  3. Harris N.L., Jaffe E.S., Stein H. et al. A Revised European-American Classification of Lymphoid Neoplasms: A Proposal from the International Lymphoma Study Group // Blood. 1994. Vol. 84. P. 1361.
  4. Greaves M., Brown G., Rapson N., Lister T. Antisera to Acute Lymphoblastic Leukemia Cells // Clin. Immunol. Immunopathol. 1975. Vol. 4, № 1. P. 67.
  5. Becker E.L., Henson P.M. In vitro studies of immunologically induced secretion of mediators from cells and related phenomena // Adv. Immunol. 1973. Vol. 17. P. 93−193.
  6. Betts M.R., Brenchley J.M., Price D.A. Sensitive and Variable Identification of Antigen-specific CD8+T cells by a Flow Cytometric Assay for Degranulation // J. Immunol. Methods. 2003. Vol. 281. P. 65−78.
  7. Rossi M.I., Yokota T., Medina K.L. et al. B-lymphopoiesis is Active Throughout Human Life, but there are Developmental Age-related Changes // Blood. 2003. Vol. 281. P. 576−584.
  8. Casazza J.P., Betts M.R., Price D.A. Acquisition of Direct Antiviral Effector Functios by CMV-specific CD4+ T Lymphocytes with Cellular Maturation // J. Exp. Med. 2006. Vol. 203(13). P. 2865−2877.
  9. Metzgar R.S., Borowitz M.J., Jones N.H., Dowell B.L. Distribution of Common Acute Lymphoblastic Leukemia Antigen in Nonhematopoietic Tissues // J. Exp. Med. 1981. Vol. 154(4). P. 1249−1254.
  10. Ritz J., Nadler L., Bhan A. et al. Expression of a Common Acute LymphoBlastic Leukemia Antigen (CALLA) by Lymphomas of B-cell and T-cell Lineage // Blood. 1981. Vol. 58(3). P. 648.
  11. Gale D.P., Maxwell P.H. The Role of HIF in Immunity // Int. J. Biochem. Cell Biol. 2010. Vol. 42(4). P. 486−494.
  12. Gerriets V.A., Rathmell J.C. Metabolic Pathways in T cell Fate and Function // Trends Immunol. 2012. Vol. 33(4). P. 168−173.
  13. Goldstein J.L. Genetic Aspects of Hyperlipidemia in Coronary Heart Disease // Hosp. Practice. 1973. P. 53−65.
  14. Henson P.M. Pathologic Mechanism in Neutrophil-mediated Injury // Am. J. Pathol. 1972. Vol. 68. P. 593−606.
  15. Lotner G.Z., Lynch J.M., Betz S.J., Henson P.M. Human Neutrophil-derived Platelet Activating Factor // J. Immunol. 1980. Vol. 124. P. 646−684.
  16. Los M., Schenk H., Hexel K. et al. IL-2 Gene Expression and NF-kappa B Activation through CD28 Requires Reactive Oxygen Production by 5-lipoxygenase // EMBO J. 1995. Vol. 14(15). P. 3731−3740.
  17. Kominsky D.J., Campbell E.L., Colgan S.P. Metabolic Shifts in Immunity and Inflammation // J. Immunol. 2010. Vol. 184(8). P. 4062−4068.
  18. Lavrentieva A., Majore I., Kasper K., Hass R. Effects of Hypoxic Culture Conditions on umbilical Cord-derived Human Mesenchymal strem Cells // Cell Communication and Signaling. 2010. Vol. 8(1). P. 18−25.
  19. Meyron-Holtz E.G., Ghosh M.C., Rouault T.A. Mammalian Tissue Oxygen Levels Modulate Iron-regulatory Protein Activities in Vivo // Science. 2004. Vol. 306(5704). P. 2087−2090.
  20. Nekanti U., Dastidar S., Venugopal P. et al. Increased Proliferation and Analysis of Differential Gene Expression in Human Wharton’s Jelly-derived Mesenchymal Stromal Cells Under Hypoxia // Cell. 2010. Vol. 6(5). P. 499−521.
  21. Yun S., Lee S.H., Yoon S.-R. et al. Oxygen Tension Regulates NK Cells Differentiation from Haematopoietic Stem Cells in vitro // Immunol. Lett. 2011. Vol. 137(1-2). P. 70−77.
  22. Rolfs A., Kvietikova I., Gassmann M., Wenger R.H. Oxygen-regulated Transferrin Expression is Mediated by Hypoxia-inducible Factor-1 // J. Biol. Chem. 1997. Vol. 272(32). P. 20055−20062.
  23. Post J., Hoffman J. Сell Renewal Patterns // New Engl. J. Med. 1968. Vol. 279(5). P. 248−258.
  24. Greaves M., Hariri G., Newman R. et al. Selective Expression of the Common Acute Lymphoblastic Leukemia (gp100) Antigen on Immature Lymphoid Cells and their Malignant Counterparts // Blood. 1983. Vol. 61. P. 628.
  25. Shipp M., Look A. Hematopoietic Differentiation Antigens that are Membrane-Associated Enzymes: Cutting is the Key! // Blood. 1993. Vol. 82(4). P. 1052.
  26. Thiery J., Keefe D., Boulant S. et. al. Perforin Pores in the Endosomal Membrane Trigger the Release of Endocytosed Granzyme B into the Cytosol of Target Cells // Nat. Immunol. 2011. Vol. 12(8). P. 770−777.
  27. Wright D.G., Gallin J. A Functional Differentiation of Human Neutrophil Granules: Generation of C5a by a Specific (secondary) Granule Product and Inactivation of C5a by Azurophil (primary) Granule Products // J. Immunol. 1977. Vol. 119(3). P. 1068−1076.