CC..png   

16plus.png

Юридический и почтовый адрес организации-издателя: САФУ, редакция «Журнала медико-биологических исследований», ул, Урицкого, 56, г. Архангельск, Россия, 163002
Местонахождение: редакция «Журнала медико-биологических исследований», ул. Урицкого, 56, г. Архангельск

Тел: (818-2) 21-61-00, вн. 18-20 
Сайт: https://vestnikmed.ru
e-mail: vestnik_med@narfu.ru

о журнале

Влияние различных режимов питьевой депривации на систему антиоксидантной защиты крови и поведенческую активность крыс. С. 254–261

Версия для печати

Рубрика: Физиология

Скачать статью (pdf, 2.1MB )

УДК

615.241:591.112.1

Сведения об авторах

И.С. Матюлько*, А.А. Байжуманов**, Е.Э. Хиразова**, М.В. Маслова**
*Научно-исследовательский институт нормальной физиологии имени П.К. Анохина (Москва)
**Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова (Москва)
Ответственный за переписку: Матюлько Ирина Сергеевна, адрес: 125315, Москва, ул. Балтийская, д. 8; e-mail: irinamatulko@gmail.com

Аннотация

Многие люди в современном мире живут в условиях ограниченного доступа к чистой питьевой воде. Постоянный уровень гидратации жизненно необходим для нормального функционирования и поддержания гомеостаза систем организма. В данной работе исследовали влияние двух режимов питьевой депривации на активность системы антиоксидантной защиты крови, протекание процессов свободнорадикального окисления в клетках и поведенческую активность крыс. Самцов крыс линии Wistar (n = 50) депривировали по воде на 96 ч с доступом к пище ad libitum. По окончании депривационного периода проводили регистрацию поведенческой активности в тесте «Открытое поле» и измеряли показатели активности системы антиоксидантной защиты. Поведенческую активность оценивали по показателям ориентировочно-исследовательской активности, уровню тревожности и локомоторной активности, активность системы антиоксидантной защиты крови – по значениям общей антиоксидантной активности в плазме крови, каталазной активности в гемолизате крови, активности цитоплазматической и внеклеточной изоформ Cu,Zn-супероксиддисмутазы, также измеряли уровень маркеров окислительного стресса в плазме крови и содержание неферментативных антиоксидантов в крови и плазме, принимающих участие в поддержании редокс-статуса клетки. Среди общих показателей метаболизма определяли уровень гемоглобина в крови и концентрацию белка в плазме. Результаты исследования показали, что 96-часовая питьевая депривация приводит к изменениям в уровне тревожности крыс, выраженным в снижении количества актов и времени груминга. Среди показателей активности системы антиоксидантной защиты были выявлены различия в уровне гемоглобина в крови, содержании церулоплазмина в плазме, общей антиоксидантной активности плазмы крови и каталазной активности крови. Таким образом, показано, что длительная питьевая депривация активирует систему антиоксидантной защиты крови в ответ на окислительный стресс и вызывает активацию воспалительных процессов. Дегидратационный стресс также увеличивает тревожность животных.

Ключевые слова

питьевая депривация, дегидратационный стресс, система антиоксидантной защиты крови, поведенческая активность

Список литературы

1. Progress on Sanitation and Drinking Water: 2015 Update and MDG Assessment. URL: http://files.unicef.org/ publications/files/Progress_on_Sanitation_and_Drinking_Water_2015_Update_.pdf (дата обращения: 26.06.2018).
2. Jéquier E., Constant F. Water as an Essential Nutrient: The Physiological Basis of Hydration // Eur. J. Clin. Nutr. 2010. Vol. 64, № 2. P. 115–123.
3. Faraco G., Wijasa T.S., Park L., Moore J., Anrather J., Iadecola C. Water Deprivation Induces Neurovascular and Cognitive Dysfunction Through Vasopressin-Induced Oxidative Stress // J. Cereb. Blood Flow Metab. 2014. Vol. 34, № 5. P. 852–860.
4. Rowland N.E. Food or Fluid Restriction in Common Laboratory Animals: Balancing Welfare Considerations with Scientific Inquiry // Comp. Med. 2007. Vol. 57, № 2. P. 149–160.
5. Watts A.G. Dehydration-Associated Anorexia: Development and Rapid Reversal // Physiol. Behav. 1999. Vol. 65, № 4-5. P. 871–878.
6. Stephens D.B. Effects of Water Availability on Plasma Protein and Sodium Concentration, Haematocrit and Plasma Osmolality in the Pig // Q. J. Exp. Physiol. 1985. Vol. 70, № 3. P. 389–401.
7. Cui F., Liu H., Zou Z., Li H. Metabolic Responses to Water Deprivation in C57BL/6J Mice Using a Proton Nuclear Magnetic Resonance-Based Metabonomics Approach // RSC Adv. 2015. Vol. 5, № 98. P. 80142–80149.
8. Moody T.W., Merali Z., Crawley J.N. The Effects of Anxiolytics and Other Agents on Rat Grooming Behavior // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1988. Vol. 525, № 1. P. 281–289.
9. Kametani H. Analysis of Age-Related Changes in Stress Induced Grooming in the Rat: Differential Behavioral Profile of Adaptation to Stress // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1988. Vol. 525, № 1. P. 101–113.
10. Ахмадеев А.В., Калимуллина Л.Б. Нейробиологические характеристики предпочитающих и отвергающих алкоголь крыс, имеющих различия генотипа по локусу Taq 1A DRD2 // Вопр. наркологии. 2013. № 3. С. 22–29.
11. Salas S.P., Giacaman A., Vío C.P. Renal and Hormonal Effects of Water Deprivation in Late-Term Pregnant Rats // Hypertension. 2004. Vol. 44, № 2. P. 334–339.
12. Rubin D.B., Reznik G., Weiss E.A., Young P.R. Non-Protein Thiols Flux to S-Nitrosothiols in Endothelial Cells: An LPS Redox Signal // Shock. 2000. Vol. 14, № 2. P. 200–207.
13. Ranganathan P.N., Lu Y., Jiang L., Kim C., Collins J.F. Serum Ceruloplasmin Protein Expression and Activity Increases in Iron-Deficient Rats and Is Further Enhanced by Higher Dietary Copper Intake // Blood. 2011. Vol. 118, № 11. P. 3146–3153.