CC..png   

Юридический и почтовый адрес организации-издателя: САФУ, редакция «Журнала медико-биологических исследований», наб. Северной Двины, 17, г. Архангельск, Россия, 163002
Местонахождение: редакция «Журнала медико-биологических исследований», наб. Северной Двины, 17, ауд. 1336, г. Архангельск

Тел: (818-2) 21-61-21 
Сайт: https://vestnikmed.ru
e-mail: vestnik_med@narfu.ru
            vestnik@narfu.ru

о журнале

Влияние различных режимов питьевой депривации на систему антиоксидантной защиты крови и поведенческую активность крыс. С. 254–261

Версия для печати

Рубрика: Физиология

УДК

615.241:591.112.1

Сведения об авторах

И.С. Матюлько*, А.А. Байжуманов**, Е.Э. Хиразова**, М.В. Маслова**
*Научно-исследовательский институт нормальной физиологии имени П.К. Анохина (Москва)
**Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова (Москва)
Ответственный за переписку: Матюлько Ирина Сергеевна, адрес: 125315, Москва, ул. Балтийская, д. 8; e-mail: irinamatulko@gmail.com

Аннотация

Многие люди в современном мире живут в условиях ограниченного доступа к чистой питьевой воде. Постоянный уровень гидратации жизненно необходим для нормального функционирования и поддержания гомеостаза систем организма. В данной работе исследовали влияние двух режимов питьевой депривации на активность системы антиоксидантной защиты крови, протекание процессов свободнорадикального окисления в клетках и поведенческую активность крыс. Самцов крыс линии Wistar (n = 50) депривировали по воде на 96 ч с доступом к пище ad libitum. По окончании депривационного периода проводили регистрацию поведенческой активности в тесте «Открытое поле» и измеряли показатели активности системы антиоксидантной защиты. Поведенческую активность оценивали по показателям ориентировочно-исследовательской активности, уровню тревожности и локомоторной активности, активность системы антиоксидантной защиты крови – по значениям общей антиоксидантной активности в плазме крови, каталазной активности в гемолизате крови, активности цитоплазматической и внеклеточной изоформ Cu,Zn-супероксиддисмутазы, также измеряли уровень маркеров окислительного стресса в плазме крови и содержание неферментативных антиоксидантов в крови и плазме, принимающих участие в поддержании редокс-статуса клетки. Среди общих показателей метаболизма определяли уровень гемоглобина в крови и концентрацию белка в плазме. Результаты исследования показали, что 96-часовая питьевая депривация приводит к изменениям в уровне тревожности крыс, выраженным в снижении количества актов и времени груминга. Среди показателей активности системы антиоксидантной защиты были выявлены различия в уровне гемоглобина в крови, содержании церулоплазмина в плазме, общей антиоксидантной активности плазмы крови и каталазной активности крови. Таким образом, показано, что длительная питьевая депривация активирует систему антиоксидантной защиты крови в ответ на окислительный стресс и вызывает активацию воспалительных процессов. Дегидратационный стресс также увеличивает тревожность животных.

Ключевые слова

питьевая депривация, дегидратационный стресс, система антиоксидантной защиты крови, поведенческая активность
Скачать статью (pdf, 2.1MB )

Список литературы

1. Progress on Sanitation and Drinking Water: 2015 Update and MDG Assessment. URL: http://files.unicef.org/ publications/files/Progress_on_Sanitation_and_Drinking_Water_2015_Update_.pdf (дата обращения: 26.06.2018).
2. Jéquier E., Constant F. Water as an Essential Nutrient: The Physiological Basis of Hydration // Eur. J. Clin. Nutr. 2010. Vol. 64, № 2. P. 115–123.
3. Faraco G., Wijasa T.S., Park L., Moore J., Anrather J., Iadecola C. Water Deprivation Induces Neurovascular and Cognitive Dysfunction Through Vasopressin-Induced Oxidative Stress // J. Cereb. Blood Flow Metab. 2014. Vol. 34, № 5. P. 852–860.
4. Rowland N.E. Food or Fluid Restriction in Common Laboratory Animals: Balancing Welfare Considerations with Scientific Inquiry // Comp. Med. 2007. Vol. 57, № 2. P. 149–160.
5. Watts A.G. Dehydration-Associated Anorexia: Development and Rapid Reversal // Physiol. Behav. 1999. Vol. 65, № 4-5. P. 871–878.
6. Stephens D.B. Effects of Water Availability on Plasma Protein and Sodium Concentration, Haematocrit and Plasma Osmolality in the Pig // Q. J. Exp. Physiol. 1985. Vol. 70, № 3. P. 389–401.
7. Cui F., Liu H., Zou Z., Li H. Metabolic Responses to Water Deprivation in C57BL/6J Mice Using a Proton Nuclear Magnetic Resonance-Based Metabonomics Approach // RSC Adv. 2015. Vol. 5, № 98. P. 80142–80149.
8. Moody T.W., Merali Z., Crawley J.N. The Effects of Anxiolytics and Other Agents on Rat Grooming Behavior // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1988. Vol. 525, № 1. P. 281–289.
9. Kametani H. Analysis of Age-Related Changes in Stress Induced Grooming in the Rat: Differential Behavioral Profile of Adaptation to Stress // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1988. Vol. 525, № 1. P. 101–113.
10. Ахмадеев А.В., Калимуллина Л.Б. Нейробиологические характеристики предпочитающих и отвергающих алкоголь крыс, имеющих различия генотипа по локусу Taq 1A DRD2 // Вопр. наркологии. 2013. № 3. С. 22–29.
11. Salas S.P., Giacaman A., Vío C.P. Renal and Hormonal Effects of Water Deprivation in Late-Term Pregnant Rats // Hypertension. 2004. Vol. 44, № 2. P. 334–339.
12. Rubin D.B., Reznik G., Weiss E.A., Young P.R. Non-Protein Thiols Flux to S-Nitrosothiols in Endothelial Cells: An LPS Redox Signal // Shock. 2000. Vol. 14, № 2. P. 200–207.
13. Ranganathan P.N., Lu Y., Jiang L., Kim C., Collins J.F. Serum Ceruloplasmin Protein Expression and Activity Increases in Iron-Deficient Rats and Is Further Enhanced by Higher Dietary Copper Intake // Blood. 2011. Vol. 118, № 11. P. 3146–3153.