CC..png   

Юридический и почтовый адрес организации-издателя: САФУ, редакция «Журнала медико-биологических исследований», наб. Северной Двины, 17, г. Архангельск, Россия, 163002
Местонахождение: редакция «Журнала медико-биологических исследований», наб. Северной Двины, 17, ауд. 1336, г. Архангельск

Тел: (818-2) 21-61-21 
Сайт: https://vestnikmed.ru
e-mail: vestnik_med@narfu.ru; 
            vestnik@narfu.ru

о журнале

Влияние агониста бета-адренорецепторов мирабегрона на активность нейтрофилов венозной крови небеременных женщин. С. 241–252

 Версия для печати

Рубрика: Биологические науки

УДК

612.112.9.91

DOI

10.37482/2687-1491-Z112

Сведения об авторах

И.Г. Патурова* ORCID: https://orcid.org/0000-0002-8555-4525
Т.В. Полежаева** ORCID: https://orcid.org/0000-0003-4999-3077
О.О. Зайцева** ORCID: https://orcid.org/0000-0001-9427-0420
О.Н. Соломина** ORCID: https://orcid.org/0000-0001-5187-8698
А.Н. Худяков** ORCID: https://orcid.org/0000-0003-3757-8263
М.И. Сергушкина** ORCID: https://orcid.org/0000-0002-3113-527X
В.И. Циркин*** ORCID: https://orcid.org/0000-0003-3467-3919
С.Л. Дмитриева**** ORCID: https://orcid.org/0000-0002-2505-0202
*Кировский государственный медицинский университет (г. Киров)
**Федеральный исследовательский центр «Коми научный центр Уральского отделения Российской академии наук» (Республика Коми, г. Сыктывкар)
***Казанский государственный медицинский университет (Республика Татарстан, г. Казань)
****Кировский областной клинический перинатальный центр (г. Киров)
Ответственный за переписку: Патурова Инна Геннадьевна, адрес: 610027, г. Киров, ул. К. Маркса, д. 112; e-mail: paturova_ig@mail.ru

Аннотация

Цель работы – определить влияние агониста бета3-адренорецепторов мирабегрона на свободнорадикальную активность нейтрофилов венозной крови небеременных женщин. Материалы и методы. С помощью хемилюминесцентного метода (аппарат БХЛ-07) определялись параметры радикального ответа нейтрофилов венозной крови 40 небеременных женщин в разные фазы цикла и в первые сутки после родов при дополнительной стимуляции клеток латексными частицами (0,08 мкм). При автоматическом вычете уровня шума регистрировались: максимальное значение интенсивности процесса синтеза активных форм кислорода, время выхода интенсивности процесса на максимум, а также площадь под кривой хемилюминограммы, отражающая суммарный синтез радикальных частиц за 30 мин исследования. Данные показатели определялись до и после введения в венозную кровь in vitro агониста бета3-адренорецепторов мирабегрона (10–6 г/л), блокатора бета-адренорецепторов пропранолола гидрохлорида (10–6 г/л), агониста на фоне блокатора. Результаты. С помощью непараметрического критерия Уилкоксона показано повышение свободнорадикальной активности нейтрофилов женщин в фолликулярной фазе менструального цикла под влиянием мирабегрона по всем трем оцениваемым параметрам. В лютеиновую фазу менструального цикла мирабегрон значимо увеличивал скорость развития реакции и суммарный синтез радикальных частиц, но не влиял на интенсивность продукции активированных форм кислорода. Однако в первые сутки после родов эффект отсутствовал. В статье обсуждается возможный механизм выявленного действия мирабегрона в отношении процесса синтеза активных форм кислорода. Авторы полагают, что изменение показателей активности нейтрофилов венозной крови под действием данного агониста бета3-адренорецепторов может быть обусловлено изменением количества бета3-адренорецепторов или их чувствительности в разные фазы репродукции.

Ключевые слова

мирабегрон, бета-адренорецепторы, респираторный взрыв нейтрофилов, небеременные женщины, фазы менструального цикла, родильницы
Скачать статью (pdf, 0.6MB )

Список литературы

  1. Finlin B.S., Memetimin H., Zhu B., Confides A.L., Vekaria H.J., El Khouli R.H., Johnson Z.R., Westgate P.M., Chen J., Morris A.J., Sullivan P.G., Dupont-Versteegden E.E., Kern P.A. The β3-Adrenergic Receptor Agonist Mirabegron Improves Glucose Homeostasis in Obese Humans. J. Clin. Invest., 2020, vol. 130, no. 5, pp. 2319–2331. DOI: 10.1172/JCI134892
  2. Cypess A.M., Weiner L.S., Roberts-Toler C., Franquet Elía E., Kessler S.H., Kahn P.A., English J., Chatman K., Trauger S.A., Doria A., Kolodny G.M. Activation of Human Brown Adipose Tissue by a β3-Adrenergic Receptor Agonist. Cell Metab., 2015, vol. 21, no. 1, pp. 33–38. DOI: 10.1016/j.cmet.2014.12.009
  3. Bertholet A.M., Kazak L., Chouchani E.T., Bogaczyńska M.G., Paranjpe I., Wainwright G.L., Bétourné A., Kajimura S., Spiegelman B.M., Kirichok Y. Mitochondrial Patch Clamp of Beige Adipocytes Reveals UCP1-Positive and UCP1-Negative Cells Both Exhibiting Futile Creatine Cycling. Cell Metab., 2017, vol. 25, no. 4, pp. 811–822. DOI: 10.1016/j.cmet.2017.03.002
  4. MacPherson R.E.K., Dragos S.M., Ramos S., Sutton C., Frendo-Cumbo S., Castellani L., Watt M.J., Perry C.G.R., Mutch D.M., Wright D.C. Reduced ATGL-Mediated Lipolysis Attenuates β-Adrenergic-Induced AMPK Signaling, but Not the Induction of PKA-Targeted Genes, in Adipocytes and Adipose Tissue. Am. J. Physiol. Cell Physiol., 2016, vol. 311, no. 2, pp. C269–C276. DOI: 10.1152/ajpcell.00126.2016
  5. Ferrari F., Bock P.M., Motta M.T., Helal L. Biochemical and Molecular Mechanisms of Glucose Uptake Stimulated by Physical Exercise in Insulin Resistance State: Role of Inflammation. Arq. Bras. Cardiol., 2019, vol. 113, no. 6, pp. 1139–1148. DOI: 10.5935/abc.20190224
  6. Belge C., Hammond J., Dubois-Deruy E., Manoury B., Hamelet J., Beauloye C., Markl A., Pouleur A.-C., Bertrand L., Esfahani H., Jnaoui K., Götz K.R., Nikolaev V.O., Vanderper A., Herijgers P., Lobysheva I., Iaccarino G., Hilfiker-Kleiner D., Tavernier G., Langin D., Dessy C., Balligand J.-L. Enhanced Expression of β3-Adrenoceptors in Cardiac Myocytes Attenuates Neurohormone-Induced Hypertrophic Remodeling Through Nitric Oxide Synthase. Circulation, 2014, vol. 129, no. 4, pp. 451–462. DOI: 10.1161/CIRCULATIONAHA.113.004940
  7. Balligand J.-L. Cardiac Salvage by Tweaking with Beta-3-Adrenergic Receptors. Cardiovasc. Res., 2016, vol. 111, no. 2, pp. 128–133. DOI: 10.1093/cvr/cvw056
  8. Michel L.Y.M., Balligand J.-L. New and Emerging Therapies and Targets: Beta-3 Agonists. Handb. Exp. Pharmacol., 2017, vol. 243, pp. 205–223. DOI: 10.1007/164_2016_88
  9. Wang B., Xu M., Li W., Li X., Zheng Q., Niu X. Aerobic Exercise Protects Against Pressure Overload-Induced Cardiac Dysfunction and Hypertrophy via β3-AR-nNOS-NO Activation. PLoS One, 2017, vol. 12, no. 6. Art. no. e0179648. DOI: 10.1371/journal.pone.0179648
  10. Zhang M., Xu Y., Chen J., Qin C., Liu J., Guo D., Wang R., Hu J., Zou Q., Yang J., Wang Z., Niu X. Beta3Adrenergic Receptor Activation Alleviates Cardiac Dysfunction in Cardiac Hypertrophy by Regulating Oxidative Stress. Oxid. Med. Cell. Longev., 2021, vol. 2021. Art. no. 3417242. DOI: 10.1155/2021/3417242
  11. Bubb K.J., Ravindran D., Cartland S.P., Finemore M., Clayton Z.E., Tsang M., Tang O., Kavurma M.M., Patel S., Figtree G.A. β3 Adrenergic Receptor Stimulation Promotes Reperfusion in Ischemic Limbs in a Murine Diabetic Model. Front. Pharmacol., 2021, vol. 12. Art. no. 666334. DOI: 10.3389/fphar.2021.666334
  12. Wang J., Zhou Z., Cui Y., Li Y., Yuan H., Gao Z., Zhu Z., Wu J. Meta-Analysis of the Efficacy and Safety of Mirabegron and Solifenacin Monotherapy for Overactive Bladder. Neurourol. Urodyn., 2019, vol. 38, no. 1, pp. 22–30. DOI: 10.1002/nau.23863
  13. Calvani M., Dabraio A., Bruno G., De Gregorio V., Coronnello M., Bogani C., Ciullini S., Marca G., Vignoli M., Chiarugi P., Nardi M., Vannucchi A.M., Filippi L., Favre C. β3-Adrenoreceptor Blockade Reduces Hypoxic Myeloid Leukemic Cells Survival and Chemoresistance. Int. J. Mol. Sci., 2020, vol. 21, no. 12. Art. no. 4210. DOI: 10.3390/ ijms21124210
  14. Procino G., Carmosino M., Milano S., Dal Monte M., Schena G., Mastrodonato M., Gerbino A., Bagnoli P., Svelto M. β3 Adrenergic Receptor in the Kidney May Be a New Player in Sympathetic Regulation of Renal Function. Kidney Int., 2016, vol. 90, no. 3, pp. 555–567. DOI: 10.1016/j.kint.2016.03.020
  15. Yu X.-Y., Lin S.-G., Wang X.-M., Liu Y., Zhang B., Lin Q.-X., Yang M., Zhou S.-F. Evidence for Coexistence of Three β-Adrenoceptor Subtypes in Human Peripheral Lymphocytes. Clin. Pharmacol. Ther., 2007, vol. 81, no. 5, pp. 654–658. DOI: 10.1038/sj.clpt.6100154
  16. Hadi T., Douhard R., Dias A.M.M., Wendremaire M., Pezzè M., Bardou M., Sagot P., Garrido C., Lirussi F. Beta3 Adrenergic Receptor Stimulation in Human Macrophages Inhibits NADPHoxidase Activity and Induces Catalase Expression via PPARγ Activation. Biochim. Biophys. Acta Mol. Cell Res., 2017, vol. 1864, no. 10, pp. 1769–1784. DOI: 10.1016/j.bbamcr.2017.07.003
  17. Takusagawa S., van Lier J.J., Suzuki K., Nagata M., Meijer J., Krauwinkel W., Schaddelee M., Sekiguchi M., Miyashita A., Iwatsubo T., van Gelderen M., Usui T. Absorption, Metabolism and Excretion of [(14)C]Mirabegron (YM178), a Potent and Selective β3-Adrenoceptor Agonist, After Oral Administration to Healthy Male Volunteers. Drug Metab. Dispos., 2012, vol. 40, no. 4, pp. 815–824. DOI: 10.1124/dmd.111.043588
  18. Панасенко Л.М., Краснова Е.И., Ефремов А.В. Клиническое значение хемилюминесцентного ответа лейкоцитов крови при коклюше // Бюл. Сиб. отд-ния РАМН. 2005. Т. 25, № 3(117). С. 44–47.
  19. Quinn M.T., Gauss K.A. Structure and Regulation of the Neutrophil Respiratory Burst Oxidase: Comparison with Nonphagocyte Oxidases. J. Leukoc. Biol., 2004, vol. 76, no. 4, pp. 760–781. DOI: 10.1189/jlb.0404216
  20. Kanashiro A., Hiroki C.H., da Fonseca D.M., Birbrair A., Ferreira R.G., Bassi G.S., Fonseca M.D., Kusuda R., Cebinelli G.C.M., da Silva K.P., Wanderley C.W., Menezes G.B., Alves-Fiho J.C., Oliveira A.G., Cunha T.M., Pupo A.S., Ulloa L., Cunha F.Q. The Role of Neutrophils in Neuro-Immune Modulation. Pharmacol. Res., 2020, vol. 151. Art. no. 104580. DOI: 10.1016/j.phrs.2019.104580
  21. Marino F., Scanzano A., Pulze L., Pinoli M., Rasini E., Luini A., Bombelli R., Legnaro M., de Eguileor M., Cosentino M. β2-Adrenoceptors Inhibit Neutrophil Extracellular Traps in Human Polymorphonuclear Leukocytes. J. Leukoc. Biol., 2018, vol. 104, no. 3, pp. 603–614. DOI: 10.1002/JLB.3A1017-398RR
  22. Полежаева Т.В., Патурова И.Г., Зайцева О.О., Соломина О.Н., Худяков А.Н., Сергушкина М.И., Дмитриева С.Л., Циркин В.И. Особенности влияния бета-адреномиметика гинипрала на радикальную активность нейтрофилов в крови женщин на разных этапах репродукции // Журн. мед.-биол. исследований. 2021. Т. 9, № 2. С. 171–181. DOI: 10.37482/2687-1491-Z055
  23. Scanzano A., Schembri L., Rasini E., Luini A., Dallatorre J., Legnaro M., Bombelli R., Congiu T., Cosentino M., Marino F. Adrenergic Modulation of Migration, CD11b and CD18 Expression, ROS and Interleukin-8 Production by Human Polymorphonuclear Leukocytes. Inflamm. Res., 2015, vol. 64, no. 2, pp. 127–135. DOI: 10.1007/s00011-014-0791-8
  24. Gibson-Berry K.L., Whitin J.C., Cohen H.J. Modulation of the Respiratory Burst in Human Neutrophils by Isoproterenol and Dibutyryl Cyclic AMP. J. Neuroimmunol., 1993, vol. 43, no. 1-2, pp. 59–68. DOI: 10.1016/0165-5728(93)90075-a
  25. Brunskole Hummel I., Reinartz M.T., Kälble S., Burhenne H., Schwede F., Buschauer A., Seifert R. Dissociations in the Effects of β2-Adrenergic Receptor Agonists on cAMP Formation and Superoxide Production in Human Neutrophils: Support for the Concept of Functional Selectivity. PLoS One, 2013, vol. 8, no. 5. Art. no. e64556. DOI: 10.1371/journal.pone.0064556
  26. Motiejunaite J., Amar L., Vidal-Petiot E. Adrenergic Receptors and Cardiovascular Effects of Catecholamines. Ann. Endocrinol. (Paris), 2021, vol. 82, no. 3-4, pp. 193–197.
  27. Luppi P., Irwin T.E., Simhan H., DeLoia J.A. CD11b Expression on Circulating Leukocytes Increases in Preparation for Parturition. Am. J. Reprod. Immunol., 2004, vol. 52, no. 5, pp. 323–329. DOI: 10.1111/j.1600-0897.2004.00229.x
  28. Chapple C.R., Cardozo L., Nitti V.W., Siddiqui E., Michel M.C. Mirabegron in Overactive Bladder: A Review of Efficacy, Safety, and Tolerability. Neurourol. Urodyn., 2014, vol. 33, no. 1, pp. 17–30. DOI: 10.1002/nau.22505