УДК

591.4:616.155.34

DOI

10.37482/2687-1491-Z244

Сведения об авторах

Альбина Рашитовна Никитина* ORCID: https://orcid.org/0000-0001-8186-8204
Клара Рашитовна Зиякаева* ORCID: https://orcid.org/0000-0002-3923-2736
Алия Фаритовна Каюмова* ORCID: https://orcid.org/0000-0003-1983-1392
*Башкирский государственный медицинский университет
(Уфа, Россия)

Аннотация

Метод компьютерной морфометрии позволяет детально изучать как морфометрические особенности нейтрофилов, так и их оптические свойства. Показатель преломления компонентов цитоплазмы непосредственно зависит от ее гранулированности, наличия или отсутствия органелл и включений, а показатель преломления хроматина – от его структурной упорядоченности. С учетом этого морфометрические и оптические показатели можно использовать в качестве характеристик функциональной и метаболической активности нейтрофильных лейкоцитов при воздействии неблагоприятных факторов среды на организм. Целью исследования явилось изучение морфометрических и оптических показателей нейтрофилов крыс на различных сроках интоксикации медно-цинковой колчеданной рудой. Материалы и методы. В эксперименте использовались 68 нелинейных крыс-самцов 3–4-месячного возраста (средняя масса тела 210,5±10,5 г), которые были разделены на контрольную и три опытных группы в зависимости от срока интоксикации рудой (20, 45 и 60 сут.). Морфометрические и оптические показатели нейтрофилов определялись методом компьютерной морфометрии с помощью комплекса автоматической микроскопии «Мекос-Ц2» (Россия) для анализа мазков, установленного на микроскопе AXIO Lab.A1 (ZEISS, Германия). Результаты. Во все сроки эксперимента происходило уменьшение общей площади клетки и площади цитоплазмы нейтрофилов на фоне снижения оптической плотности цитоплазмы и ядра. Зафиксированы статистически значимые отрицательные корреляции площади ядра и его оптической плотности на всем протяжении эксперимента. Снижение оптической плотности цитоплазмы нейтрофилов под влиянием руды свидетельствует об уменьшении количества гранул в цитоплазме, а ядра – об увеличении доли деконденсированного хроматина. Снижение оптической плотности цитоплазмы по всем спектральным компонентам, сочетающееся с уменьшением ее площади, обусловлено резким ослаблением функциональных возможностей нейтрофильных гранулоцитов под действием руды. Уменьшение оптической плотности ядер нейтрофилов, очевидно, связано с функциональной реорганизацией хроматина, с переходом факультативного гетерохроматина в эухроматин.

Ключевые слова

нейтрофилы периферической крови, площадь поверхности клетки, площадь цитоплазмы, площадь клеточного ядра, оптическая плотность цитоплазмы, оптическая плотность клеточного ядра, медно-цинковая колчеданная руда, крысы

Список литературы

1. Андрюков Б.Г., Богданова В.Д., Ляпун И.Н. Фенотипическая гетерогенность нейтрофилов: новые антимикробные характеристики и диагностические технологии // Гематология и трансфузиология. 2019. Т. 64, No 2. С. 211–221. https://doi.org/10.35754/0234-5730-2019-64-2-211-221
2. Barnes P.J., Shapiro S.D., Pauwels R.A. Chronic Obstructive Pulmonary Disease: Molecular and Cellular Mechanisms // Eur. Respir. J. 2003. Vol. 22, No 4. P. 672–688. https://doi.org/10.1183/09031936.03.00040703
3. Owen C.A., Campbell M.A., Sannes P.L., Boukedes S.S., Campbell E.J. Cell Surface-Bound Elastase and Cathepsin G on Human Neutrophils: A Novel, Non-Oxidative Mechanism by Which Neutrophils Focus and Preserve Catalytic Activity of Serine Proteinases // J. Cell Biol. 1995. Vol. 131, No 3. P. 775–789. https://doi.org/10.1083/jcb.131.3.775
4. Василенко И.А., Никитин А.А., Малыченко Н.В., Иванюта И.А., Метелин В.Б., Агаджанян Б.Я. Цитометрия нейтрофилов в оценке эффективности комплексного лечения больных остеомиелитом нижней челюсти // Альм. клин. медицины. 2008. No 18. С. 63–68.
5. Гаспарян С.А., Попова О.С., Василенко И.А., Хрипунова А.А., Метелин В.Б. Оценка фенотипа интерфазных ядер лимфоцитов методом количественного фазового имиджинга (QPI) у пациенток с эндометриоидными кистами яичников // Альм. клин. медицины. 2017. Т. 45, No 2. С. 109–117. https://doi.org/10.18786/2072-0505-2017-45-2-109-117
6. Heidarian A., Yousefi E., Somma J. Digital Image Analysis of Nuclear Morphometry in Thyroid Fine Needle Biopsies // J. Am. Soc. Cytopathol. 2017. Vol. 6, No 5. P. 76. https://doi.org/10.1016/j.jasc.2017.06.189
7. Toledo Hidalgo D., Diaz Rojas P.A., Torres Batista M., Sánchez Anta A. La densidad óptica nuclear como indicador diagnóstico en el carcinoma papilar de tiroides // Rev. Cubana Investig. Bioméd. 2020. Vo l. 39, No 3. URL: https://www.scienceopen.com/document?vid=6ec04930-2cf8-4434-bb75-5deaf6a9a23e (дата обращения: 14.08.2024).
8. Колесник Е.А., Дерхо М.А., Ребезов М.Б. Функциональные морфоденситометрические параметры хроматина ядра и цитоплазмы эритробластов и эритроцитов птиц в постэмбриональном онтогенезе // Аграр. вестн. Урала. 2024. Т. 24, No 1. С. 59–85. https://doi.org/10.32417/1997-4868-2024-24-01-59-85
9. Федосенко С.В., Черногорюк Г.Э., Рослякова Е.П. Влияние тиотропия бромида на морфофункциональные свойства нейтрофилов и макрофагов бронхиального дерева при хронической обструктивной болезни легких стабильного течения // Пульмонология. 2010. No 5. С. 56–60. https://doi.org/10.18093/0869-0189-2010-5-56-60
10. Потапнев М.П., Гущина Л.М., Мороз Л.А. Фенотипическая и функциональная гетерогенность субпопуляций нейтрофилов в норме и при патологии // Иммунология. 2019. Т. 40, No 5. С. 84–96. https://doi.org/10.24411/0206-4952-2019-15009
11. Зиякаева К.Р., Каюмова А.Ф., Шамратова В.Г. Дизрегуляторные сдвиги в системе красной крови при длительной интоксикации медно-цинковой колчеданной рудой (экспериментальное исследование) // Медицина труда и пром. экология. 2021. Т. 61, No 4. С. 224–230. https://doi.org/10.31089/1026-9428-2021-61-4-224-230
12. Бондарь Т.П., Ишкова Н.М., Запорожцева О.И. Возможности компьютерной цитоморфометрии эозинофилов при эозинофилиях различного генеза // Сарат. науч.-мед. журн. 2010. Т. 6, No 1. С. 108–111.
13. Козинец Г.И., Погорелов В.М., Шмаров Д.А., Боев С.Ф., Сазонов В.В. Клетки крови: современные технологии их анализа. М.: Триада-фарм, 2002. 535 с.
14. Арешидзе Д.А. Механизмы поддержания и изменений формы и размеров клеточного ядра (обзор) // Морфол. вед. 2022. Т. 30, No 3. С. 73–80. https://doi.org/10.20340/mv-mn.2022.30 (3).670
15. Gasparotto M., Lee Y.-S., Palazzi A., Vacca M., Filippini F. Nuclear and Cytoplasmatic Players in Mitochondria-Related CNS Disorders: Chromatin Modifications and Subcellular Trafficking // Biomolecules. 2022. Vo l. 12, No 5. Art. No 625. https://doi.org/10.3390/biom12050625
16. Красикова А.В., Куликова Т.В. Распределение маркеров гетерохроматина в хромосомах типа ламповых щеток у птиц // Генетика. 2017. Т. 53, No 9. С. 1077–1085. https://doi.org/10.7868/S0016675817090077