УДК

[611.452:612.821.44](045)

DOI

https://doi.org/10.37482/2687-1491-Z281

Сведения об авторах

Евгения Вадимовна Штемплевская* ORCID: https://orcid.org/0000-0001-9776-272X
Игорь Алексеевич Чернов* ORCID: https://orcid.org/0000-0002-6475-5731
Ашот Меружанович Авдалян** ORCID: https://orcid.org/0000-0002-2229-1713
Андрей Ильич Ничипоров** ORCID: https://orcid.org/0009-0006-6895-5278
Василий Георгиевич Сиповский*** ORCID: https://orcid.org/0000-0002-1512-8037
Людмила Андреевна Макарцева**** ORCID: https://orcid.org/0000-0002-1882-8848
Юрий Александрович Кириллов**** ORCID: https://orcid.org/0000-0003-3555-0902
*Тюменский государственный медицинский университет (Тюмень, Россия)
**Московский многопрофильный клинический центр «Коммунарка» (Москва, Россия)
***Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова (Санкт-Петербург, Россия)
****Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского (Москва, Россия)
Ответственный за переписку: Игорь Алексеевич Чернов, адрес: 625023, г. Тюмень, ул. Одесская, д. 54; e-mail: chern_igor@mail.ru

Аннотация

При алкогольной болезни этанол и его метаболиты, в частности ацетальдегид, в первую очередь повреждают нервную, сердечно-сосудистую системы и печень. Вместе с тем в течение последних трех десятилетий наблюдается увеличение частоты развития острой надпочечниковой недостаточности (геморрагического адреналита) у лиц, страдающих алкогольной болезнью, особенно при различных стрессорных ситуациях, включая травмы, оперативные вмешательства, манифестации инфекционных осложнений. Целью настоящей работы является изучение структурных и функциональных особенностей модификации секреции катехоламинов хромаффиноцитами мозгового вещества надпочечников под влиянием этанола и освещения в эксперименте. Материалы и методы. Исследование проведено на 90 крысах-самцах линии Wistar (возраст – 6 мес.). Животные были разделены на три равные группы: контрольную (общий рацион и традиционный режим освещения «день/ночь») и две опытных, получавших в качестве питья 15 %-й раствор этанола и находившихся либо при традиционном режиме освещения «день/ночь» (первая), либо при постоянном освещении (вторая). Хромаффиноциты изучались морфологически, включая ультраструктурный анализ, и морфометрически. Содержание катехоламинов в сыворотке крови определялось методом конкурентного иммуноферментного анализа. Результаты. Употребление раствора этанола крысами приводило к ослаблению гетерогенности популяций хромаффиноцитов, инициации модификации секреции катехоламинов, что проявлялось нарушением структуры и организации секреторных компартментов. В сочетании с постоянным освещением этанол вызывал утрату гетерогенности хромаффиноцитов, ретардацию экзоцитоза, инициацию и дальнейшую реализацию секреции по типу микроапокринии, суть которой сводится к высвобождению содержимого секреторных гранул непосредственно в цитоплазму клетки, что сопровождается дисбалансом уровней адреналина и норадреналина в крови.

Для цитирования: Модификация секреции катехоламинов хромаффиноцитами мозгового вещества надпочечников этанолом и освещением в эксперименте / Е. В. Штемплевская, И. А. Чернов, А. М. Авдалян, А. И. Ничипоров, В. Г. Сиповский, Л. А. Макарцева, Ю. А. Кириллов // Журнал медико-биологических исследований. – 2026. – Т. 14, № 2. – С. 14-23. – DOI 10.37482/2687-1491-Z281.

Ключевые слова

алкогольная болезнь, комбинация этанола с освещением, хромаффиноциты, мозговое вещество надпочечников, модификация секреции катехоламинов, ретардация экзоцитоза, крысы

Список литературы

1. Чернов И.А., Макарцева Л.А., Авдалян А.М., Проценко Д.Н., Муратова М.В., Кириллов Ю.А. Морфофункциональное состояние мозгового вещества надпочечников и их циркадные ритмы в условиях постоянного освещения и хронической алкогольной интоксикации // Мед. наука и образование Урала. 2023. Т. 24, № 1(113). С. 119–126.

2. Пауков В.С., Воронина Т.М., Кириллов Ю.А., Малышева Е.М. Структурно-функциональные основы алкогольной болезни // Рос. журн. гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2018. Т. 28, № 5. С. 7–17. https://doi.org/10.22416/1382-4376-2018-28-5-7-17

3. Singhal M., Sharma S., Tom N.B., Agarwal M.K., Mathur A. A Study of Adrenal Insufficiency in Hemodynamically Stable Patients with Cirrhosis // J. Assoc. Physicians India. 2022. Vol. 70, № 4. Р. 11–12.

4. Park S.H., Joo M.S., Kim B.H., Yoo H.N., Kim S.E., Kim J., Jang M.K., Kim D.J., Lee M.S. Clinical Characteristics and Prevalence of Adrenal Insufficiency in Hemodynamically Stable Patients with Cirrhosis // Medicine (Baltimore). 2018. Vol. 97, № 26. Art. № e11046. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000011046

5. Söderpalm B., Ericson M. Alcohol and the Dopamine System // Int. Rev. Neurobiol. 2024. Vol. 175. P. 21–73. https://doi.org/10.1016/bs.irn.2024.02.003

6. Christopher V., Murthy S., Sr A., Singh S., Cp A., Shivaram S.K., Neethupriya. Morphometry as a Diagnostic Tool for Potentially Malignant Lesions // J. Clin. Diagn. Res. 2015. Vol. 9, № 12. Р. ZC22–ZC25. https://doi.org/10.7860/JCDR/2015/15838.6959

7. Karnovsky M.J. A Formaldehyde-Glutaraldehyde Fixative of High Osmolality for Use in Electron Micro- scopy // J. Cell Biol. 1965. Vol. 27. P. 137–138A.

8. Kawamura H., Ichihara I. Possible Microapocrine-Type Secretion Developing in Prostatic Secretory Epithelial Cells of Older Rats in the Early Stage of Castration // Anat. Anz. 1987. Vol. 163, № 4. P. 289–300.

9. Saluja A., Hashimoto S., Saluja M., Powers R.E., Meldolesi J., Steer M.L. Subcellular Redistribution of Lysosomal Enzymes During Caerulein-Induced Pancreatitis // Am. J. Physiol. 1987. Vol. 253, № 4, pt. 1. P. 508–516. https://doi.org/10.1152/ajpgi.1987.253.4.G508

10. Talukdar R., Sareen A., Zhu H., Yuan Z., Dixit A., Cheema H., George J., Barlass U., Sah R., Garg S.K., Banerjee S., Garg P., Dudeja V., Dawra R., Saluja A.K. Release of Cathepsin B in Cytosol Causes Cell Death in Acute Pancreatitis // Gastroenterology. 2016. Vol. 151, № 4. P. 747–758.e5. https://doi.org/10.1053/j.gastro.2016.06.0422

11. Reunov A., Reunov A., Pimenova E., Reunova Y., Menchinskaiya E., Lapshina L., Aminin D. The Study of the Calpain and Caspase-1 Expression in Ultrastructural Dynamics of Ehrlich Ascites Carcinoma Necrosis // Gene. 2018. Vol. 658. P. 1–9. https://doi.org/10.1016/j.gene.2018.03.012

12. Nakashima T., Wang K.Y., Matsuoka H., Ogawa K., Endo Y., Harada K., Inoue M. Developmental Changes in Gap Junction Expression in Rat Adrenal Medullary Chromaffin Cells // Acta Histochem. Cytochem. 2024. Vol. 57, № 6. Р. 189–197. https://doi.org/10.1267/ahc.24-00033

13. Brodie M.S., Scholz A., Weiger T.M., Dopico A.M. Ethanol Interactions with Calcium- Dependent Potassium Channels // Alcohol Clin. Exp. Res. 2007. Vol. 31, № 10. P. 1625–1632. https://doi.org/10.1111/j.1530-0277.2007.00469.x

14. Harada K., Matsuoka H., Inoue M. Expression of Mitochondrial Uncoupling Proteins and GABA Signaling Molecules in Unstimulated and Nerve Growth Factor-Stimulated PC12 Cells: Models for Chromaffin Cells and Sympathetic Neurons // J. Histochem. Cytochem. 2025. Vol. 73, № 5-6. P. 251–266. https://doi.org/10.1369/00221554251332981

15. Park S.Y., Walker J.J., Johnson N.W., Zhao Z., Lightman S.L., Spiga F. Constant Light Disrupts the Circadian Rhythm of Steroidogenic Proteins in the Rat Adrenal Gland // Mol. Cell. Endocrinol. 2013. Vol. 371, № 1–2. P. 114–123. https://doi.org/10.1016/j.mce.2012.11.010

16. Kurhaluk N., Tkachenko H. Melatonin and Alcohol-Related Disorders // Chronobiol. Int. 2020. Vol. 37, № 6. Р. 781–803. https://doi.org/10.1080/07420528.2020.1761372

17. Ernst O.P., Lodowski D.T., Elstner M., Hegemann P., Brown L.S., Kandori H. Microbial and Animal Rhodopsins: Structures, Functions, and Molecular Mechanisms // Chem. Rev. 2024. Vol. 114, № 1. P. 126–363. https://doi.org/10.1021/cr4003769